1. Trang chủ
  2. » Khoa Học Tự Nhiên

Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)

84 206 0

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Định dạng
Số trang 84
Dung lượng 22,8 MB

Các công cụ chuyển đổi và chỉnh sửa cho tài liệu này

Nội dung

Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)

Trang 1

NGUY N TH TUY T NHUNG

Trang 2

NGUY N TH TUY T NHUNG

Trang 4

Sinh

Trang 5

i

ii

iii

vi

vii

viii

1

3

1.1 B 3

1.1.1 3

4

1.1.3 5

6

1.2.1 6

7

1 8

1.3.1 , .8

9

10

12

12

13

1.4.3 .16

17

18

Trang 6

21

22

24

1 25

27

27

27

27

27

itro .27

28

28

28

29

29

32

34

35

35

3.1.1 .35

3.1.2 Ch 37

Trang 7

45

45

47

48

50

51

3.3.2 53

53

55

56

57

3.4.3 .58

61

62

68

Trang 8

BSA : Bovine Serum Albumin

SOF : Synthetic oviduct fluid

Trang 9

3.1: c 35

37

39

42

45

47

c 49

51

53

54

p 56

57

59

Trang 10

h 1.1: 3

11

17

23

33

36

38

39

40

42

: 43

7: 44

50

: 52

3.10: 55

57

60

Trang 13

Nang tr

Nang tr

(Tertiary)

Trang 14

,

Trang 17

Trang 21

( , 1995) [12] Prolactin Releasing Hormone (PRH)

Trang 24

Theo (1988) [37],

phosphoribosyl transferase

(1971) [19],

,(1985) [39],

Trang 26

( , 2006) [44]

Trang 27

g Theo (Johnson and Welch 1999) [26]

Trang 33

- 16-

-(trophoblast

Trang 38

-B: B

Trang 41

trong t CO2 (CO2Incubator,

th 7 ti

Trang 43

2.3.2.2 Ph i gi

tinh b c m 37oC trong kho

Trang 49

c (lo i A, B) u c

c 50 % ttinh trong ng nghi m

Trang 50

B ng 3.3 H p t thu c sau khi th tinh

Trang 52

ng h p t n vi

K1(1,6 x 106/ml)

2(2,5 x 106/ml)

Trang 62

L

9

Trang 65

3.4

in vivo.

Trang 69

2

2

0,05)

Trang 70

2

2

Trang 72

,, tr 140-143

4

,, tr 117-118

75 82.

6 Adams G P., Matteri R, L,, Ginther O J (1992), Effect of progesterone

on ovarian follicles, emergence of follicular waves and circulating

follicle-stimulating hormone in heifers , Journal of Reproduction and

Fertility, 95, pp 627-640.

7 Ahmad N., Townsend E C., Dailey R A., Inskeep E.K (1997), Relationship of hormonal patterns and fertility to occurrence of two or three waves of ovarian follicles, before and after breeding, in beef cows

and heifers , Animal Reproduction Science, 49, pp 13-28.

8 Bavister B D (1996), Culture of preimplantation embryos: facts and

artifacts , Hum Reprod Update, 1, pp 91-148.

9 Bearden H J., Fuquay J W (2000), The female reproduction system ,

Applied Animal reproduction, Prentice Hall, InC, pp 7-20.

Trang 73

King W A (2009) Analysis of bovine sexed for IVF from sorting to the

embryo , Theriogenology, 71, pp.30-38.

11 Brackett B G., Oliphan G (1975), Capacitation of rabbit spermatozoa

in vitro , Biology of Reproduction, 12, pp 260-274.

12 Campbell B K., Scaramuzzi R J., Webb R (1995), Control of antral

follicle development and selection in sheep and cattle , Journal of

Reproduction and fertility, 49, pp 335-350.

13 Carvalho J O., Satori R., Machado G M., Mourao G B., Dode M A N (2010), Quality assessement of bovine cryopreserved sperm after sexing

by flow cytometry and their use in vitro embryo production ,

Theriogenology, 74, pp.1521-1530.

14 De Loos F., Kastrop P., Vanmaurik P., Vanbeneden T H., Kruip T A

M (1991), Heterologous cell contacts and metabolic coupling in bovine

cumulus oocyte complexes , Molecular Reproduction and Development,

28, pp 255-259

15 Erickson B H (1965), Symposium on atomic energy in animal science:

Radiation effects on gonadal development in farm animals , Journal of

Animal Science, 24, pp 568-583.

16 Fry R C., Naill E M., Sympson T J., Squires T J., Raynold J (1997), The

collection oocytes from bovine ovaries , Theriogenology, 47, pp 977-987.

17 Ganner D L (2006), Flow cytometric sexing of mammalian sperm ,

Theriogenology, 65, pp 943-957.

18 Ginther O J., Knopf L., Kastelic J P (1989), Temposal associations among ovarian events in cattle during estrus cycles with two or three

follicular waves , Journal of Reproduction and Fertility, 108, pp 271-279.

19 Golberg E H., Boyse E A., Bennett D., Scheid M., Carswell E A (1971) Serologycal demonstration of H-Y (male) antigen on mouse sperm ,

Mature 232, pp 43.

20 Goodhand K L., Staines M E., Hutchinson J S M., Broadbent P J (2000), In vivo oocyte recovery and in vitro embryo production from bovine oocyte doner treated with progestagen, oestradiol , Animal reproduction, 63, pp 145-185.

Trang 74

21 Hayakawa H., Hirai T., Takimoto A., Ideta A., Aoyagi Y (2009), Superrovulation and embryo transfer in Holstein cattle using sexed

23 Ijaz A., Lambert R D., Sirard M A (1994), in vitro cultured bovine

granulose and oviductal cells secrete sperm motility-maintaining

factor(s) , Molecular Reproduction and Development, 37, pp 54-60.

24 Imai K., Tagawa M., Yoshioka H., Matoba S., Narita M., Inaba Y., Aikawa Y., Ohtake M., Kobayashi S (2006), The effiency of embryo

production by ovum pick-up and in vitro fertilization in cattle , Journal

of Reproduction and Development, 52, pp 19-29.

25 Iwasaki, S., Kono, T., Nakahara, T., Shioya, Y., Fukushima, M., and

New methods for the recovery of oocytes from

Japanese jounal of Animal Reproduction (33), 188-192.

26 Johnson L A, Welch G R (1999) Sex preselection: high-speed flow cytometric sorting of X- and Y-sperm for maximum efficiency

Theriogenology, 52:1323 413.

27 Kaimio I., Mikkola M., Lindeberg H., Heikkinen J., Hasler JF., Taponen

J (2913), Embryo production with sex-sorted semen in superovulated

dairy heifers and cows , Theriogenology, 80, pp 950-954.

28 Kaska L., Smorag Z (1984), Number and quality of oocytes in relation

to age of cattle , Animal Reproduction Science, 7, pp 451-460.

29 Larson J E., Lamb G C., Funelll B J., Bird S., Martins A., Rodgers J C (2010), Embryo prodution in superovulted Angus cows insemination four times with sex-sorted or conventional, frozen-thawed semen ,

Theriogenology, 73, pp 698-307.

30 Li C., Zhu., Xue S L., Zhang S L., Ma Z., Shi Z D (2009), Immunization against inhibin enchages both embryo quantity and quality in Holstein heifers after superovulation and insemination with

sex-sorted semen , Theriogenology, 71, pp.1011-1017

Trang 75

in vitro bovine oocytes fertilized in different numbers in drops with

different sperm concentrations , Theriogenology, 33, p 275.

in artificially inseminated dairy cows , Anim Reprod, v.10, n.3,

p.143-147

fertility after artificial insemination in lactating da

35 Lu K H., Cran D G., Seidel Jr G E (1999), In vitro fertilization with

36 Matthew B., Wheeler., Jack J., Rutledge., Fisher-Brown A., VanEtten T., Malusky S., Beebe D J (2006), Application of sexed semen technology

to in vitro embryo production in cattle , Theriogenology, 65, pp

219-227

37 Monk M., Handiside A H (1988), Sexing of preimplantation mouse embryo by measurerement of X linked gen dosage in a single

blastomere , Jornal of reproduction fertilization, 82, pp 365-368.

38 Monson R L., Fischer-Brown A (2005), Personal communication production of Holstein embryos using sex-sorted sperm and oocytes

Journal of Dairy Science, 88, pp:776 82.

39 Picard L., King W A., Betteridge K J (1985), Production of sexed

calves from frozen-thawed embryos , Veterinary Record, 117, pp

603-608

40 Reuben J M., Kristina B S., Gregg P A (2002), Regent advances in

the superovulation in cattle , Reprod Nutri Dev, 42, pp 601-611.

41 Saeki K., Nagao Y., Hoshil M., Nagai M (1995), Effects of heparin,

sperm concentration and bull variation on in vitro fertilization of bovine oocytes in a protein-free media , Theriogenology, 43, pp 751-759

Trang 76

42 Sales J N S., Neves K A L., Souza A H., Crepaldi G A., Sala R V., Fosado M., Campos E P., Faria M (2011), Timming insemination using

sex-sorted sperm , Theriogenology, 76, pp 427-435.

43 Schenk J L., Suh T K., Cran D G., Seidel Jr G E (1999)

46 Seidel G E (2003), Economics of selecting for sex: the most important

genetic trait , Theriogenology, 59, pp.585-598.

47 Seidel Jr G E., Schenk J L., Herickhoff L A., Doyle SP., Brink Z (1999),

20

48 Senger PL, Becker WC, Davidge ST, Hillers JK, Reeves JJ (1988),Influence of cornual insemination on conception in dairy cattle J Anim Sci, 66:3010-3016.

49 Sirard M A., Leibfried-Rutledge M L., Parrish J J., Ware C., First N L (1988), The culture of bovine oocytes to obtain developmentally

competent embryos , Biological Reproduction, 39, pp 546-552.

50 Sirois J., Fortune J E (1990), Lengthening the bovine estrus cycle with low levels of exogenous progesterone: A model for studying ovarian

follicular dominance , Endocrinology, 127, pp 916-925

51 Townson D H., Tsang P C W., Butler W R., Frajblat M., Griel Jr L C., Johnson C J., Milvae R A., Niksis G M., Pate J L (2002), Relationship of fertility to ovarian follicular waves before breeding in

dairy cows , Journal of Animal Science, 80, pp 1053-1058.

Trang 77

Characteristics of calves produced with sperm sexed by flow

53 Underwood S L., Bathgate R., Pereira D C., Castro A., Thomson P C., Maxwell W M C., Evans G (2010), Embryo production after in viro fertilization with frozen-thawed, sex-sorted, re-frozen-thawed bull

sperm , Theriogenology, 73, pp 97-102

54 Williams T J (1986), A technique for sexing mouse embryos by a visual colorimetric assay of the X lingked enzyme, glucose-6-phosphat

dehydrogenase , Theriogenology, 25, pp 733.

55 Wilson R D., Fricke P M., Leibfried-Rutledge M L., Rutledge J J.,

Syverson C M., Wwigel K A (2006), In vitro production of bovine

embryo using sex-sorted sperm Theriogenology, 65, pp 1007-1015.

56 Zhang M., Lu K H., Seidel G E (2003), Development of bovine embryos after in vitro fertilization of oocytes with flow cytometrically

sorted, stained and unsorted sperm , Theriogenology, 60, pp:1657 1663.

57 Ziebe S., Petersen K., Lindenberg S., Anderson A G., Gabrielsen A., Andersen A N (1997), Embryo morphology or cleavage stage: How to

select the best embryo for transfer after in vitro fertilization , Human

Reproduction, 12, pp 1545-1549.

Trang 79

-Sucrose C12H22O11196-00015 Wako Japan.

Disodium Hydrogenphosphate Na2HPO4197-02865 Wako Japan

D(+) Glucose C6H12O6 041-00595 Wako Japan

Potassium Dihydrogenphosphate KH2PO4165-04242 Wako Japan.Potassium Chloride KCl 163-03545 Wako Japan

Sodium Chloride NaCl 191-01665 Wako Japan

Sodium Dihydrogen Phosphate Dihydrate NaH2CO3.2H2O 192-02815 Wako Japan

Calcium Chloride Dihydrate CaCl2.2H2O 031-00435 Wako Japan

Phenol Red Solution 0,5% P0290 Sigma

Magnesium Chloride Hexahydrate MgCl2.6H2O 131-00162 Wako Japan.Ethylene Glycol C2H6O2Prolabo Germany

Trang 80

Glycerol Prolabo Germany.

Medium 199 3769 GIBCO

BME Amino Acide Solution 50x B-6766 Sigma

MEM Non-Essential Amino Acide Solution 100x 02380 GIBCO.Penicilin G Potassium 200.000 Meiji Seika Kaisha LTD Tokyo Japan.Novo-Heparin Pharmaceutical Products LTD V ventis Japan

Streptomycin Sulphate 1g Meiji Kaisna LTD Tokyo Japan

L-Glutamic Acid G-4815 Sigma

Albumin, Bovine A-4378 Sigma

Caffein Sodium Benzoate C-4144 Sigma

L(+)-Lactic Acid L-4388 Sigma

Albumin, Bovine A-7030 Sigma

Sodium Pyruvate 199-03062 Wako Japan

Ngày đăng: 20/02/2018, 20:19

TỪ KHÓA LIÊN QUAN

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

TÀI LIỆU LIÊN QUAN

🧩 Sản phẩm bạn có thể quan tâm