Nghiên cứu xác định nguồn vật liệu và thiết lập bộ chỉ thị tham chiếu Đề tài đã thu thập được tập đoàn 261 dòng/giống lúa để sử dụng trong đề tài nhằm sàng lọc tìm kiếm các alen có thể
Trang 1ỨNG DỤNG CÔNG NGHỆ SINH HỌC TRONG XÁC ĐỊNH
TÍNH ĐỒNG NHẤT, TÍNH KHÁC BIỆT VÀ TÍNH ỔN ĐỊNH
CỦA LÚA PHỤC VỤ CHO KHẢO NGHIỆM DUS
Lưu Minh Cúc, Lưu Thị Ngọc Huyền,
Lê Huy Hàm
Viện Di truyền Nông nghiệp
SUMMARY (Application of biotechnology in identifying the distinctness, uniformity,
stability of rice varieties to aid for DUS testing)
This study aimed at developing procedures for identifying the distinctness, uniformity, stability of rice varieties to aid for DUS testing The collection of 261 lines/varieties, which are abundant about sources, desease resistance, tolerance to biotic and abiotic stresses, were used in screening Using the information from published data about DUS testing on rice in country around the world like China, Brazil, India , walk along 12 rice chromosomes, 557 markers were selected The use of those markers to screen with the large numbers of rice varieties were carried out A strategy of upside down conical in many steps of screening was applied At last, a reference set of DNA markers were selected This set was including 30 markers Procedures for identifying the distinctness, uniformity, stability of rice varieties to aid for DUS testing were developed These procedures are tightly suitable to current DUS testing regulations In addtion, a software namely DUS-DFP, with the DNA fingerprint data of 180 rice varieties base on 30 reference markers, was developed for applying all the results of this study in DUS testing purpose
Keywords: biotechnology, distinctness, uniformity, stability, DUS testing, rice
I ĐẶT VẤN ĐỀ *
Theo tiêu chuẩn của Hiệp hội Quốc tế về
Bảo vệ Giống cây trồng mới (International
Union for the Protection of New Varieties of
Plants), các cây trồng mới được chọn tạo phải
trải qua khâu kiểm nghiệm theo tiêu chí DUS
(bao gồm khảo nghiệm tính khác biệt -
distinctness, tính đồng nhất - uniformity và tính
ổn định - stability) Trong 10 năm gần đây, mỗi
năm Trung tâm Khảo Kiểm nghiệm giống, sản
phẩm cây trồng Quốc gia thường gặp phải tình
trạng (5 - 10 trường hợp mỗi năm) các giống
đưa ra khảo nghiệm có các đặc điểm hình thái
(thỉnh thoảng cả đặc điểm hóa sinh) khó phân
biệt Trong một số trường hợp, giống cây trồng
của các tác giả khác nhau hoặc được nhập nội có
tên gọi khác nhau, nhưng về mặt hình thái lại rất
giống nhau, gây ra những tranh cãi khó giải
quyết Câu hỏi đặt ra là thực chất chúng thuộc
một giống hay các giống khác nhau? Các tiêu
chí khảo nghiệm DUS truyền thống dựa trên 62
đặc điểm hình thái và hóa sinh cho thấy chưa đủ
Người phản biện: TS Lã Tuấn Nghĩa
cơ sở để phân biệt các giống với nhau Điều này gây nhiều khó khăn và cản trở trong việc xác minh bản quyền về giống cây trồng Những tiến
bộ gầy đây trong công nghệ sinh học nói chung
và sinh học phân tử thực vật nói riêng đã có nhiều đóng góp tích cực không chỉ trong việc chọn tạo ra những giống cây trồng mới mà còn giúp phân biệt các đặc điểm di truyền của các bộ giống mới được chọn tạo hoặc giống nhập nội Cho đến nay, nhiều nước trên thế giới sử dụng
hệ thống khảo nghiệm DUS dựa trên cơ sở các đặc điểm hình thái và hóa sinh Tuy nhiên, một
số quốc gia đã bắt đầu áp dụng phương pháp
ADN dùng cho khảo nghiệm DUS (Navraj và
cs., 2009) Đối với công tác khảo nghiệm DUS
ở nước ta, việc xây dựng một qui trình giám định giống chính xác ở mức độ phân tử là một việc làm hết sức cần thiết Góp phần vào công tác khảo nghiệm DUS giống lúa nhằm xác định tính đúng giống, cũng như để tránh khỏi những tranh cãi, đồng thời bảo hộ bản quyền tác giả, chúng tôi đã tiến hành nghiên cứu ứng dụng công nghệ sinh học trong xác định tính đồng nhất, tính ổn định và tính khác biệt của lúa phục
vụ cho khảo nghiệm DUS
Trang 2II VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1 Vật liệu
- Tập đoàn 261 giống lúa thu thập
- 40 giống lúa để đánh giá DUS
- 180 giống lúa để lập cơ sở dữ liệu
- 19 giống lúa điển hình của Trung tâm Khảo
nghiệm
- 19 giống lúa giống nhau theo cặp trong
khảo nghiệm DUS năm 2010- 2012
- Tổng số 557 chỉ thị phân tử đã dùng để
khảo sát lập bộ chỉ thị tham chiếu
- Các vật tư hoá chất sinh học phân tử
chuyên dụng
2.2 Phương pháp nghiên cứu
- Tách chiết ADN tổng số theo phương pháp
CTAB cải tiến (của Phòng thí nghiệm Di truyền
học, Trường Đại học Gent, Bỉ)
- Phương pháp PCR (Michael and Simon
2006)
- Điện di gel polyacrylamide biến tính và
không biến tính (PTN IRRI-Phillipine)
- Thí nghiệm đồng ruộng được tiến hành
theo Quy phạm khảo nghiệm tính khác biệt, tính
đồng nhất và tính ổn định của giống lúa 10TCN
554-2002
- Các biện pháp kỹ thuật khác được tiến hành
theo Quy phạm khảo nghiệm giá trị canh tác và
giá trị sử dụng giống lúa 10TCN 558-2002
- Xử lý số liệu thu được bằng phân tích trên
phần mềm POPGEN 1.31 và NTSYS 2.1, Power
Marker 3.0
III KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.1 Nghiên cứu xác định nguồn vật liệu và
thiết lập bộ chỉ thị tham chiếu
Đề tài đã thu thập được tập đoàn 261
dòng/giống lúa để sử dụng trong đề tài nhằm
sàng lọc tìm kiếm các alen có thể có trên các
giống lúa đối với các chỉ thị được sử dụng trong
nghiên cứu
Bước đầu tiên, nghiên cứu tiến hành khảo sát
261 giống lúa thu thập từ nhiều nguồn khác nhau
đối với 100 chỉ thị gồm 81 chỉ thị SSR rải rác
trên 12 NST có số lượng từ 3-8 alen và 19 chỉ thị
thiết kế khi nghiên cứu vùng bảo thủ của các
promoter tập trung vào các cis-element hay chính
là trình tự điều khiển để nhân tố phiên mã bám vào và điều hòa biểu hiện gene và các EST ở lúa
Mở rộng phạm vi tìm kiếm, bước tiếp theo
được tiến hành với 152 chỉ thị InDel marker
được thiết kế dựa trên sự so sánh trình tự hệ gen
của giống lúa Indica 93-11 và giống lúa Japonica
Nipponbare, có thể xác định được sự đa hình từ các đột biến thêm/bớt (insertion/delection) trong
hệ gen lúa Đây chính là những chỉ thị đa hình cao và hoạt động tốt được sàng lọc từ 756 chỉ thị STS nằm trên toàn bộ hệ gen lúa với khoảng cách 2-3 cM/chỉ thị phân bố tương đối đều trên 12 NST của lúa Sản phẩm nhân bản của đoạn ADN
từ các chỉ thị này có thể chứa ít nhất 5% đoạn chèn-xóa khác nhau của kích thước các băng nhận được (trong khoảng từ 100-400bp) Những chỉ thị này có thể phân biệt rất tốt những sự khác biệt giữa các giống lúa mới được tạo ra bằng lai tạo, đột biến, phân biệt giữa các giống lúa thuộc
loài phụ Indica và Japonica Để thực hiện tốt
hơn công việc sàng lọc tìm kiếm chỉ thị của đề tài, chúng tôi đã tìm kiếm, tiếp cận thêm các thông tin về chỉ thị phân tử, chọn lọc thông tin, tiến hành thu thập và lọc cơ sở dữ liệu, từ đó đề tài đã sử dụng thêm các chỉ thị trên 12 NST, dọc theo bản đồ genome của lúa, đã chọn được thêm hơn 300 chỉ thị SSR đã cho kết quả hoạt động tốt
từ các nghiên cứu được tham khảo, đã được sử dụng để đánh giá đa dạng di truyền, nghiên cứu
sự khác biệt, lập bản đồ, đánh giá DUS trên các nghiên cứu trong và ngoài nước, cho băng ADN
rõ ràng để sàng lọc chỉ thị đa hình cao cho bộ chỉ thị tham chiếu
Nghiên cứu được tiến hành trên tổng số 557 chỉ thị SSR với 261giống để sàng lọc tìm chỉ thị cho đa hình cao trên tập đoàn giống lúa phong phú Chỉ những chỉ thị cho băng vạch rõ ràng và
có dấu hiệu cho đa hình sẽ được chọn cho bước sàng lọc tiếp theo Kích thước của các alen đối với những chỉ thị cho băng vạch ADN rõ nét và kích thước băng phù hợp được ghi nhận lại để chọn lựa, loại bỏ dần những chỉ thị không phù hợp Các locus SSR được sử dụng cho mục đích xác định cá thể phải thoả mãn được một số yêu cầu nhất định Thứ nhất, các locus SSR đó phải
có mức độ đa hình cao (nhiều alen), điều này giúp các nhà phân tích chỉ cần sử dụng số lượng locus tối thiểu đã đạt được độ tin cậy cao trong mỗi lần giám định Thứ hai, các locus SSR đó phải có độ dài trung bình từ 85 - 400 bp, để có thể dễ dàng thực hiện phản ứng PCR và thao tác nhuộm phát hiện băng ADN trên gel
Trang 3polyacrylamide Thứ ba, các locus SSR được sử
dụng để phân tích phải nằm trên các NST khác
nhau để đảm bảo cho tính độc lập của từng locus
Thứ tư, các locus SSR nằm trên những vùng liên
quan đến hoạt động sống của cơ thể Thứ năm,
các chỉ thị cho kết quả tốt, rõ nét, thuận lợi cho
sử dụng, dễ phân biệt trên gel polyacrylamide
Bộ chỉ thị tham chiếu được chọn lựa khi hội tụ
đầy đủ các đặc điểm như yêu cầu ở trên
Cơ sở khoa học để tính toán sự khác biệt
trong việc xác định số lượng và chỉ thị cho bộ chỉ
thị tham chiếu: Mỗi kiểu gen (genotype) cây nhị
bội mang 2 alen đối với từng locus Giả sử tần
suất xuất hiện tất cả các alen trong 1 quần thể
ngẫu nhiên là bằng nhau, đối với cây lúa là cây tự
thụ phấn (mỗi cặp alen là đồng hợp tử), số tổ hợp các cặp alen sẽ bằng tích của số alen của từng locut khảo sát (Riêng đối với cây thụ phấn chéo
là cây dị hợp tử, số tổ hợp các cặp alen sẽ lớn hơn gấp nhiều lần so với cây tự thụ phấn)
Bộ chỉ thị sơ bộ gồm 5 locus: RM11: 5 alen; RM21: 6 alen; RM163: 6alen; RM 481:
12 alen; RM3412:11 alen Nếu sử dụng cả 5 locus trên thì số tổ hợp cặp alen sẽ bằng 5 6
6 12 11 = 23.760 tổ hợp Hay nói một cách khác, nếu sử dụng bộ chỉ thị bao gồm 5 locus trên, ta có thể phân biệt được 23.760 mẫu lúa, khác nhau ít nhất bởi 1 cặp alen
Bảng 1 Danh sách các chỉ thị trong bộ chỉ thị tham chiếu
TT Chỉ thị NST Số alen Kích thước alen (số bp)
A Bộ chỉ thị sơ bộ
4 RM481 7 12 124-132-139-149-154-158-172-177-182-192-210-224
5 RM3412 1 11 148-150-154-155-160-163-165-167-168-182-190
B Bộ chỉ thị tham chiếu chính thức: bao gồm 5 chỉ thị của bộ chỉ thị sơ bộ và 15 chỉ thị khác (từ 6-20)
C Bộ chỉ thị mở rộng: 10 chỉ thị
27 RM17954 5 7 150-162-167-170-175-180-184-195-200
Trang 4Tổng số các alen của chỉ thị tham chiếu
chính thức là 120 alen Nếu sử dụng 20 chỉ thị
của bộ chỉ thị tham chiếu chính thức, ta sẽ phân
biệt được 1,32434 1015 mẫu giống khác nhau
bởi ít nhất 1 cặp alen Nếu tính thêm cả bộ chỉ thị
mở rộng ta sẽ có 172 alen, kích thước từ 80-253 bp
Khi đó nếu sử dụng cả 30 chỉ thị trên thì sẽ phân
biệt được 1,40169 1022 mẫu giống khác nhau
bởi ít nhất 1 cặp alen
Số lượng các alen đối với từng locut sẽ thay
đổi tùy thuộc vào tập đoàn giống nghiên cứu
Trong phạm vi của đề tài, chúng tôi đã tìm và xác
định được các alen như bảng 1 Các đồng nghiệp,
tác giả khác khi sử dụng bộ chỉ thị này có thể tự
cập nhật thêm số liệu
3.2 Thiết lập và thử nghiệm qui trình
Quy trình được nghiên cứu xây dựng dựa
trên nguyên tắc về sự phù hợp giữa chỉ tiêu DUS
với sự kiểm tra chỉ thị ADN như sau:
- Chỉ tiêu khác biệt: Phân tích một số lượng
nhất định các locus chỉ thị ADN cho phép thử
nghiệm kiểu gen quan tâm có khác với các kiểu
gen đã biết trước hay không và đồng thời xác
định khoảng cách di truyền giữa chúng
- Chỉ tiêu đồng nhất: Kiểu gen đồng nhất di
truyền cần phải có phổ ADN giống nhau đối với
từng locus chỉ thị ADN
- Chỉ tiêu ổn định: Hạt giống của một kiểu
gen cụ thể thu được ở các năm khác nhau thì phải
có phổ ADN của các locus chỉ thị ADN giống hệt
nhau và ổn định
Việc thử nghiệm, xây dựng quy trình khảo
nghiệm DUS bằng chỉ thị phân tử cũng phải phù
hợp với các tiêu chí của khảo nghiệm DUS bằng
hình thái và hóa sinh hiện hành, bao gồm đánh
giá tính đồng nhất, tính khác biệt và tính ổn định
Đối với quy phạm khảo nghiệm DUS hiện hành,
phương pháp chủ yếu đánh giá tính đồng nhất
căn cứ vào tỷ lệ cây khác dạng của tất cả cây trên
ô thí nghiệm
Căn cứ vào báo cáo kết quả khảo nghiệm DUS tại Trung tâm Khảo Kiểm nghiệm, giống khảo nghiệm được xem là đồng nhất nếu có từ
1-3 cây khác dạng trong số 1000 cây thí nghiệm
Như vậy khi phân tích 300-500 cây của một giống đối với bộ chỉ thị tham chiếu, nếu chỉ phát hiện thấy từ 1-2 sự khác biệt về alen thì có nghĩa
là biến động về alen trong cùng một giống tương đương với biến động kiểu hình
Để kiểm chứng và hài hòa giữa phân tích ADN và phân tích các tính trạng hình thái, chỉ tiêu sinh hóa, trong quá trình lập quy trình, đề tài
đã tiến hành khảo sát các nhóm giống bao gồm:
nhóm giống có trên 3 cây khác dạng/1000 cây, nhóm giống có từ 2-3 cây khác dạng/1000 cây;
nhóm giống không có cây khác dạng nào
Mỗi nhóm giống tiến hành phân tích sự khác biệt về alen đối với các chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu Khảo sát từ 2-5 giống trong mỗi nhóm, mỗi giống phân tích 480 cây khác nhau để kiểm chứng cơ sở khoa học và phân tích bằng xác suất thống kê, tìm sự phù hợp giữa kiểm tra bằng kiểu hình và đánh giá bằng kiểu gen Các giống lúa được gieo trồng theo đúng kỹ thuật đánh giá DUS theo thí nghiệm hàng-bông tại Trung tâm Khảo nghiệm: Chọn ngẫu nhiên 50 bông trong số
100 bông tác giả gửi đến Mỗi bông cấy 2 hàng (2 lần nhắc lại), hàng cách hàng 20cm, cây cách cây 15cm, mỗi hàng 25 cây
Kết quả khảo sát 480 cây của mỗi giống cho thấy, nhóm giống có trên 3 cây khác dạng/1000 cây có sự sai khác về alen rất lớn khi khảo sát với các chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu (từ 30-60 cây đối với 5-10 chỉ thị) Điều này được ghi nhận
trên 480 cây của giống Nếp Nhiệt đới và giống
Hương thơm số 1 Phân tích các chỉ tiêu DUS
năm 2012 cũng cho thấy hai giống này có trên 3 cây khác dạng/1000 cây quan sát
Bảng 2 Danh sách các giống dùng trong thử nghiệm ADN để lập quy trình
Nhóm Tên giống Số cây có sai khác về alen
HT8 10
Nhóm 1: Giống có nhiều hơn 3 cây khác
dạng/1000 cây trong đánh giá các tính trạng
Nhóm 2: Giống có ít hơn 3 cây khác dạng/1000
NH92 5 TB2 3
Nhóm 3: Giống không có cây khác dạng/1000
cây trong đánh giá các tính trạng hình thái
RS 0
Trang 5Hình 1 Đánh giá các cây lúa của giống Nếp Nhiệt đới đối với chỉ thị RM3412, có 10 cây cho alen
khác biệt với những cây khác
A Cây số 1-96; B Cây số 97-192; C Cây số 193-288; D Cây số 289-384 E Cây số 385-480
Kết quả phân tích 480 cây của từng giống
trong nhóm giống có từ 2-3 cây khác dạng/1000
cây cho thấy có sự sai khác về alen của 10-15 cây
đối với 3-7 chỉ thị Nhóm giống không có cây
khác dạng nào cũng vẫn có từ 1-5 cây có sự sai
khác về alen đối với 1-3 chỉ thị trong bộ chỉ thị
đem phân tích Như vậy là biến động về alen chỉ
thị phân tử lớn hơn biến động kiểu hình của
giống Điều này có thể được giải thích như sau:
Các chỉ thị ADN là trung tính, không nhất thiết
liên quan đến biểu hiện kiểu hình, vì thế biến
động alen trong cùng 1 giống lớn hơn biến động
kiểu hình
Từ những kết quả trên, để phù hợp với tiêu
chuẩn khảo nghiệm tính đồng nhất trong khảo
nghiệm DUS, với độ nhậy = 0,80 đến 0,90 và α =
0,05; nghiên cứu cần tối thiểu 50 đối tượng để
ước tính R2 ≥ 0,23; hay tối thiểu 100 để ước tính
R2 ≥ 0,12
Khi khảo sát các giống trong quá trình thử
nghiệm phương pháp, từ kết quả 261 giống thử
nghiệm ban đầu, đến những giống có từ nhiều
đến không có cây khác dạng trong phân tích
ADN đối với các chỉ thị của bộ chỉ thị tham
chiếu, kết quả thực nghiệm đã chứng tỏ mức độ
khác biệt bên trong của cùng một giống tối đa là
5 nhóm Đối với 5 chỉ thị chọn ra dùng cho bộ
chỉ thị sơ bộ, kết luận này đạt độ tin cậy ở mức α
= 0,05 tương ứng với quy định trong quy phạm
khảo nghiệm
Kết luận này cũng tương tự như kết luận của
các nhà khoa học Ucraina khi đưa ra các nguyên
tắc để xác định tính đồng nhất và độ khác biệt
bên trong của một giống đối với cây lúa mì
3.3 Quy trình xác định giống lúa thuần bằng sinh học phân tử hỗ trợ cho khảo nghiệm DUS
* Phạm vi áp dụng
Áp dụng tại các cơ sở có điều kiện về cơ sở vật chất, nguồn nhân lực và được sự cho phép của Nhà nước
* Đối tượng áp dụng
Quy trình này áp dụng cho các giống lúa thuần nhằm hỗ trợ cho công tác khảo nghiệm DUS một cách chính xác và hiệu quả hơn
* Các bước của quy trình
Bước 1: Xác định độ đồng nhất của giống
1 Tách chiết ADN tổng số của 50 cây/giống
2 Làm phản ứng PCR với 5 chỉ thị của bộ chỉ thị đánh giá sơ bộ RM11, RM21, RM163, RM481, RM3412
3 Điện di sản phẩm của phản ứng PCR trên gel polyacrylamide 4,5% hoặc 6% - 10% với ladder 25bp hoặc 50bp kèm theo
4 Ghi nhận kết quả
5 Phân tích kết quả: Giống đồng nhất khi các cá thể có sự đồng nhất về alen đối với cả 5 chỉ thị nghiên cứu
Bước 2 Kiểm tra độ khác biệt bên trong của giống
1 Khi giống không đồng nhất về alen ở bước 1, chia mẫu thành các nhóm có các thành phần alen khác nhau
Trang 62 Phân tích ADN của một mẫu đối với từng
nhóm, sử dụng 15 chỉ thị còn lại của bộ chỉ thị
tham chiếu (RM1, RM5, RM6, RM17, RM25,
RM206, RM215, RM333, RM3252, RM3843,
RM7097, R4M13, MADS3, SO1160, S11033)
3 Phân tích kết quả: Tổng hợp kết quả khảo
sát đối với cả 20 chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu,
số nhóm tối đa chỉ có thể là 5 Nếu nhiều hơn 5
nhóm thì được xem là không đồng nhất
Bước 3 Kiểm tra độ ổn định của giống
1 Tách chiết ADN tổng số của 30 cây đối
với cây lúa gieo từ hạt giống của ba vụ liên tiếp
2 Làm phản ứng PCR với ADN của 30 cây
trên đối với 5 chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu
3 Điện di sản phẩm của phản ứng PCR trên
gel polyacrylamide 4,5% hoặc 6% - 10% với
ladder 25bp hoặc 50bp kèm theo
4 Ghi nhận kết quả
5 Phân tích kết quả: Giống ổn định: các cá
thể có sự đồng nhất về alen đối với cả 5 chỉ thị
của bộ chỉ thị tham chiếu
Bước 4 Kiểm tra sự khác biệt của giống
1 Phân tích thành phần alen của giống mới
được tiến hành với 1 trong số 50 cây đã kiểm tra
ở bước 1, chọn ngẫu nhiên 1 cây
2 Làm phản ứng PCR với ADN của 1
cây/giống trên đối với toàn bộ các chỉ thị của bộ
chỉ thị tham chiếu chính thức (20 chỉ thị)
3 Điện di sản phẩm của phản ứng PCR trên
gel polyacrylamide 4,5% hoặc 6% - 10% với
ladder 25bp hoặc 50bp kèm theo
4 Ghi nhận kết quả
5 Phân tích kết quả:
- So sánh thành phần alen của giống mới với
các giống đã có trong phần mềm DUS-DFP Nếu
giống mới có nhận dạng ADN (DNA fingerprint)
không tương đồng với bất kỳ một giống nào đã
có trong thư viện quá 95% có thể xem đó là
giống mới
- Nếu giống có nhận dạng ADN tương đồng
với bất kỳ một giống nào đã có trong thư viện
quá 95% cần phải so sánh hai giống đó với nhau
sử dụng cả 30 chỉ thị của bộ chỉ thị chính thức và
mở rộng (RM19, RM223, RM341, RM3486,
RM5758, RM10825, RM17954, RM26063,
MADS8, EST20) Giống mới là giống có phổ
ADN khác hoàn toàn với các giống đã được lưu
giữ trong thư viện bởi ít nhất một trong số các chỉ
thị của bộ chỉ thị tham chiếu chính thức và một
trong số các chỉ thị của bộ chỉ thị mở rộng
Bước 5 Kết luận chung Giống mới được công nhận khi đạt tất cả các yêu cầu trong các bước kiểm tra nêu ở trên Kết luận cuối cùng phải đi kèm với kết quả đánh giá
so sánh về mặt hình thái (65 tính trạng) theo quy định của Nhà nước
* Trường hợp đặc biệt:
A - Đánh giá từ 2 giống giống nhau về các chỉ tiêu DUS hình thái
1 Lấy mẫu lá 5 cây của giống cần kiểm tra theo phương pháp đánh dấu đường chéo 5 điểm trên ruộng, mỗi cây lấy 1 lá
2 Tách chiết ADN tổng số của 5 cây/mẫu giống Trộn mẫu lá của 5 cây theo tỉ lệ cân bằng
về nồng độ để được một mẫu ADN
3 Làm phản ứng PCR của ADN các mẫu giống trên đối với tất cả các chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu chính thức (20 chỉ thị) và mở rộng (10 chỉ thị)
4 Điện di sản phẩm của phản ứng PCR trên gel polyacrylamide 4,5% hoặc 6% - 10% với ladder 25bp hoặc 50bp kèm theo
5 Ghi nhận kết quả
6 Phân tích kết quả: Nếu nhận dạng ADN của các giống được kiểm tra khác biệt hoàn toàn đối với 3/30 chỉ thị đã sử dụng (khác biệt về alen
và nhiễm sắc thể) Có thể xem các giống đó có sự khác biệt hoàn toàn
B - Một giống khác biệt với giống gốc bởi
1-2 tính trạng đặc biệt
1 Đánh giá DUS giống gốc và giống mới
2 Phân tích hai giống bằng 30 chỉ thị của bộ chỉ thị chính thức và mở rộng
3 Xác định tính trạng mới bằng phân tích kiểu hình
4 Xác định tính trạng mới bằng phân tích kiểu gen thông qua chỉ thị phân tử đặc thù cho tính trạng mới
5 Phân tích kết quả: Giống mới được công nhận khi có sự khác biệt cả về kiểu gen lẫn kiểu hình đối với tính trạng mới
3.4 Lập ngân hàng dữ liệu cho các giống lúa trồng phổ biến và giống địa phương
Phiên bản phần mềm DUS-DFP để quản lý
ngân hàng dữ liệu sinh học phân tử và phân biệt giống cây trồng dưới dạng ký hiệu hiển thị ở kích thước alen đối với mỗi locus của chỉ thị/giống đã
Trang 7được xây dựng Khi phân tích ADN của một
giống mới, dữ liệu về ADN truy vấn sẽ được
nhập vào thư viện cơ sở dữ liệu ADN đã lập sẵn
của 180 giống lúa với tất cả các chỉ thị trong bộ
chỉ thị tham chiếu có sẵn trong phần mềm
DUS-DFP Phương pháp thống kê đa chiều sẽ được sử
dụng trong phần mềm để phân tích cho ra ma trận
khoảng cách di truyền hoặc độ tương đồng giữa các giống
Đề tài đã sử dụng bộ chỉ thị tham chiếu để lập cơ sở dữ liệu của 180 giống lúa Cơ sở dữ liệu
đã được ký hiệu hóa và nhập vào phần mềm DUS-DFP để sử dụng
Hình 2 Ảnh điện di trên gel polyacrylamide 8% của 48 giống lúa với locus RM6
(L): ladder chuẩn 25bp; trên ảnh là các băng tương ứng kích thước 150bp, 175bp và 200bp
Dòng cuối ký hiệu alen 1: 142bp; alen 2: 150bp; alen 3: 156p; alen 4: 160bp
Tất cả kết quả điện di của 180 giống với
từng chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu chính thức
và mở rộng đã được nhập vào phần mềm
DUS-DFP 4.1
IV KẾT LUẬN
4.1 Kết luận
- Đã thu thập được 261 dòng/giống lúa
- Đã sử dụng 557 chỉ thị ADN để khảo sát
lựa chọn ra bộ chỉ thị tham chiếu bao gồm các chỉ
thị sau:
1) Bộ chỉ thị đánh giá sơ bộ (5 chỉ thị):
RM11, RM21, RM163, RM481, RM3412
2) Bộ chỉ thị chuẩn (20 chỉ thị): Gồm 5 chỉ
thị trên: RM11, RM21, RM163, RM481,
RM3412 và 15 chỉ thị khác: RM1, RM5, RM6,
RM17, RM25, RM206, RM215, RM333,
RM3252, RM3843, RM7097, R4M13, MADS3,
SO1160, S11033
3) Bộ chỉ thị mở rộng (10 chỉ thị): RM19,
RM223, RM341, RM3486, RM5758, RM10825,
RM17954, RM26063, MADS8, EST20
- Đã nghiên cứu, xây dựng quy trình “Xác
định giống lúa thuần bằng sinh học phân tử hỗ trợ
cho khảo nghiệm DUS” phù hợp với các tiêu chí
và tiêu chuẩn đánh giá trong công tác khảo
nghiệm DUS hiện hành
- Đã nghiên cứu xây dựng phần mềm
DUS-DFP để lưu trữ thư viện nhận dạng ADN
(DNA fingerprinting), phân tích và hỗ trợ trong
khảo nghiệm DUS
- Đã lập cơ sở dữ liệu của 180 giống lúa đối
với các chỉ thị của bộ chỉ thị tham chiếu
4.2 Đề nghị
“Quy trình xác định giống lúa thuần bằng sinh học phân tử hỗ trợ cho khảo nghiệm DUS” với mục đích cung cấp phương tiện để phục vụ cho công tác quản lý giống trong thực tại hiện nay Đề nghị đưa quy trình vào áp dụng như một bước trong cho công tác khảo nghiệm giống lúa ở Việt Nam
TÀI LIỆU THAM KHẢO
1 Bonow S., Von Pinho E.V.R., Vieira M.G.C., Vosman B (2009) Microsatellite markers in and around rice genes: applications in variety
identification and DUS testing Crop Sci., vol 49,
pp.880-886
2 Сиволап Ю.М., Волкодав В.В., Бальвинская М.С., Кожухова Н.Е., Солоденко А.С (2004) Идентификация и регистрация генотипов мягкой
пшеницы (Triticum aestivum L.), ячменя (Ноrdеum
подсолнечника (Неlіапthus аnnuus L.) с помощью
Методические рекомендации - Pешения Ученых
Советов Южного биотехнологического центра в растениеводстве УААН и МОНУ; Селекционно-генетического института Национального центра семеноводчества и сортоизучения УААН;
Госслужбы по охране прав на сорта растений
Минагрополитики Украины 17 trang
3 Deniken (2005) Molecular markers and DUS
testing, UPOV current situation Report of Proc of Seminar on the Use of Molecular Techniques for Plant Variety Protection, Ottawa, ON, Canada,
16-17 June 2005 Canadian Food Inspection Agency, Ottawa, ON, Canada
4 Michael and Simon (2006) PCR- Second Edition MPG BOOKS Limited, Bodmin, Cornwall, UK 305pages