1. Trang chủ
  2. » Luận Văn - Báo Cáo

Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2

73 4 0
Tài liệu đã được kiểm tra trùng lặp

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Tiêu đề Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây thuốc quý cốt khí củ (Polygonum cuspidatum Sieb. et Zucc) (Giai đoạn 2)
Tác giả Ks. Phạm Trần Thủy Tiên
Trường học Trường Đại Học Nông Lâm TP.HCM
Chuyên ngành Nông nghiệp
Thể loại Báo cáo
Năm xuất bản 2018
Thành phố Thành phố Hồ Chí Minh
Định dạng
Số trang 73
Dung lượng 2,83 MB

Các công cụ chuyển đổi và chỉnh sửa cho tài liệu này

Cấu trúc

  • Chương 1 TỔNG QUAN TÀI LIỆU (15)
    • 1.1 Tổng quan về nuôi cấy mô tế bào thực vật (15)
      • 1.1.1 Khái niệm (15)
      • 1.1.2 Cơ sở khoa học (15)
      • 1.1.3 Vai trò của chất kích thích sinh trưởng trong sự phát sinh hình thái thực vật (16)
      • 1.1.4 Một số phương pháp nuôi cấy mô tế bào thực vật (16)
    • 1.2 Tổng quan về cây Cốt Khí Củ (20)
      • 1.2.1 Giới thiệu chung về vây Cốt Khí Củ (20)
      • 1.2.2 Phân bố, thu hái và chế biến (20)
      • 1.2.3 Thành phần hóa học và công dụng (21)
    • 1.3 Tính hình nghiên cứu về nhân giống in vitro cây Cốt Khí Củ (22)
      • 1.3.1 Tình hình nghiên cứu trong nước (22)
      • 1.3.2 Tình hình nghiên cứu ngoài nước (22)
  • Chương 2 NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU (25)
    • 2.1 Nội dung nghiên cứu (25)
      • 2.1.1 Nội dung 1: Ảnh hưởng của một số chất điều hòa sinh trưởng thực vật (BAP, Kinetin) lên khả năng tái sinh chồi từ chồi ngủ và lá non cây Cốt khí củ (25)
      • 2.1.2 Nội dung 2: Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật (25)
      • 2.1.4 Nội dung 4: Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, nồng độ đường sucrose lên chất lượng chồi cây Cốt khí củ (26)
      • 2.1.5 Nội dung 5: Ảnh hưởng của các chế độ nuôi cấy (Thời gian ngập chìm, số lần ngập chìm và thể tích môi trường nuôi cấy) lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ trên hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời (28)
      • 2.1.6 Nội dung 6: Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật IBA lên khả năng tạo cây hoàn chỉnh cây Cốt khí củ trên môi trường bán rắn (32)
    • 2.2 Địa điểm và thời gian nghiên cứu (33)
    • 2.3 Vật liệu nghiên cứu (33)
    • 2.4 Phương pháp thí nghiệm (33)
    • 2.5 Phương pháp thu thập, xử lý số liệu và các chỉ tiêu theo dõi (34)
  • Chương 3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN (36)
    • 3.1 Ảnh hưởng của một số chất điều hòa sinh trưởng thực vật (BAP, Kinetin) lên khả năng tái sinh chồi từ chồi ngủ và lá non cây Cốt khí củ (36)
    • 3.2 Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật BAP kết hợp với (36)
    • 3.3 Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật BAP kết hợp với IBA lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ (36)
    • 3.4 Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, nồng độ đường sucrose lên chất lƣợng chồi cây Cốt khí củ (40)
    • 3.5 Ảnh hưởng của các chế độ nuôi cấy (Thời gian ngập chìm, số lần ngập chìm và thể tích môi trường nuôi cấy) lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ trên hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời (44)
      • 3.5.1 Ảnh hưởng của thời gian ngập chìm lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ (44)
      • 3.5.2 Ảnh hưởng của số lần ngập chìm lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ (46)
    • 3.6 Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật IBA lên khả năng tạo cây hoàn chỉnh cây Cốt khí củ trên môi trường bán rắn (50)
  • Chương 4 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ (53)
    • 4.1 Kết luận (53)
    • 4.2 Đề nghị (53)
  • TÀI LIỆU THAM KHẢO (54)

Nội dung

NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

Nội dung nghiên cứu

Giai đoạn 1 (đã nghiệm thu năm 2017): Nhân nhanh cụm chồi in vitro cây Cốt Khí Củ

2.1.1 Nội dung 1: Ảnh hưởng của một số chất điều hòa sinh trưởng thực vật (BAP, Kinetin) lên khả năng tái sinh chồi từ chồi ngủ và lá non cây Cốt khí củ

2.1.2 Nội dung 2: Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật BAP kết hợp với NAA và IBA lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ

Giai đoạn 2 (thực hiện năm 2018): Tạo cây Cốt Khí Củ in vitro hoàn chỉnh

2.1.3 Nội dung 3: Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật BAP kết hợp với IBA lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ Đối tượng thí nghiệm: Chồi cây Cốt khí củ có chiều cao 2 – 3cm Chồi cây

Cốt khí củ được nuôi cấy trên môi trường: khoáng cơ bản MS + đường sucrose

30 g/L có bổ sung BAP kết hợp với IBA với các nồng độ khác nhau (bảng 2.1)

Hình 2.1Chồi cây Cốt khí củ in vitro

Nghiên cứu được thực hiện thông qua phương pháp thí nghiệm hoàn toàn ngẫu nhiên với 2 yếu tố (CRD) và có bốn lần lặp lại Mỗi nghiệm thức bao gồm 3 bình, với mỗi bình chứa 3 mẫu chồi, tổng thể tích môi trường là 40 mL trong bình thủy tinh nuôi cấy 250 mL Tổng số mẫu được sử dụng trong thí nghiệm là 576 mẫu.

Bảng 2.1 Các nghiệm thức ảnh hưởng của nồng độ BAP kết hợp với IBA lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ

IBA BAP 0,1 (mg/L) 0,2 (mg/L) 0,3 (mg/L) 0,4 (mg/L)

2,0 (mg/L) IB1 IB2 IB3 IB4

2,2 (mg/L) IB5 IB6 IB7 IB8

2,4 (mg/L) IB9 IB10 IB11 IB12

2,6 (mg/L) IB13 IB14 IB15 IB16

Chỉ tiêu theo dõi: HSN chồi (lần)

Số chồi TB/mẫu (chồi/mẫu) Chiều cao chồi TB (cm)

Thời gian theo dõi: 8 tuần Điều kiện nuôi cấy: Nhiệt độ: 25 ± 2 o C

Thời gian chiếu sáng: 12h/ngày Cường độ chiếu sáng: 2000 lux

Thời gian thực hiện: từ tháng 01/2018 đến 02/2018

2.1.4 Nội dung 4: Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, nồng độ đường sucrose lên chất lượng chồi cây Cốt khí củ

Thí nghiệm 4.1 nghiên cứu ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi đến chất lượng chồi cây Cốt khí củ Đối tượng của thí nghiệm là cụm chồi cây Cốt khí củ có kích thước đường kính nhất định.

Chiều cao 2 – 3cm và kích thước chồi đường kính 1 cm được sử dụng trong thí nghiệm này Các cụm chồi được nuôi cấy trên môi trường với nồng độ BAP và IBA tối ưu, bổ sung 30 g/L đường sucrose, theo thành phần môi trường khoáng MS được trình bày trong bảng 2.2.

Phương pháp thí nghiệm được thực hiện theo kiểu hoàn toàn ngẫu nhiên một yếu tố (CRD) với bốn lần lặp lại Mỗi nghiệm thức bao gồm 10 bình, đảm bảo tính chính xác và độ tin cậy của kết quả.

13 có 3 chồi, thể tích môi trường 40 mL, bình thủy tinh nuôi cấy 250 mL Tổng số mẫu của thí nghiệm là 480

Bảng 2.2 Các nghiệm thức ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi lên chất lƣợng chồi cây Cốt khí củ

STT Kí hiệu công thức Khoáng MS biến đổi

4 CT3 ẵ tất cả cỏc thành phần MS

Chỉ tiêu theo dõi: HSN chồi (lần)

Số chồi TB/mẫu (chồi/mẫu) Chiều cao chồi TB (cm)

Thời gian theo dõi: 8 tuần Điều kiện nuôi cấy: Nhiệt độ: 25 ± 2 o C

Thời gian chiếu sáng: 12h/ngày Cường độ chiếu sáng: 2000 lux

Thời gian thực hiện: từ tháng 03/2018 đến 04/2018

Thí nghiệm 4.2 nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ đường sucrose đến chất lượng chồi cây Cốt khí củ Đối tượng thí nghiệm là cụm chồi cây Cốt khí củ có kích thước đường kính nhất định.

Trong thí nghiệm 3, chiều cao mẫu được duy trì ở mức 2 – 3cm Cụm chồi được tách nhỏ với đường kính 1cm và được nuôi cấy trên môi trường tối ưu tại thí nghiệm 4.1, với nồng độ đường sucrose được bố trí theo bảng 2.3.

Nghiên cứu này sử dụng phương pháp thí nghiệm hoàn toàn ngẫu nhiên một yếu tố (CRD) với bốn lần lặp lại Mỗi nghiệm thức bao gồm 10 bình, mỗi bình chứa 3 chồi trong môi trường có thể tích 40 mL, sử dụng bình thủy tinh nuôi cấy 250 mL Tổng số mẫu thí nghiệm là 480.

Bảng 2.3 Các nghiệm thức ảnh hưởng của nồng độ đường sucrose lên chất lƣợng chồi cây Cốt khí củ

STT Kí hiệu công thức Nồng độ đường sucrose (g/L)

Chỉ tiêu theo dõi: HSN chồi (lần)

Số chồi TB/mẫu (chồi/mẫu) Chiều cao chồi TB (cm)

Thời gian theo dõi: 8 tuần Điều kiện nuôi cấy: Nhiệt độ: 25 ± 2 o C

Thời gian chiếu sáng: 12h/ngày Cường độ chiếu sáng: 2000 lux

Thời gian thực hiện: từ tháng 05/2018 đến 06/2018

2.1.5 Nội dung 5: Ảnh hưởng của các chế độ nuôi cấy (Thời gian ngập chìm, số lần ngập chìm và thể tích môi trường nuôi cấy) lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ trên hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời

Thí nghiệm 5.1 nghiên cứu ảnh hưởng của thời gian ngập chìm đến khả năng nhân chồi của cây Cốt khí củ Đối tượng thí nghiệm là cụm chồi cây Cốt khí củ với kích thước đường kính xác định.

Chiều cao của mẫu thí nghiệm là 2 – 3 cm, với các cụm chồi được tách nhỏ có đường kính 1 cm Những cụm chồi này được nuôi cấy trên hệ thống ngập chìm tạm thời, sử dụng thành phần môi trường nuôi cấy dựa trên các kết quả từ nội dung 3 Thời gian ngập chìm cho mẫu cấy được sắp xếp theo bảng 2.4.

Phương pháp thí nghiệm được thực hiện theo kiểu hoàn toàn ngẫu nhiên một yếu tố (CRD) với bốn lần lặp lại Mỗi nghiệm thức bao gồm 5 bình, đảm bảo tỷ lệ mẫu chính xác.

15 cấy 5% trọng lượng môi trường nuôi cấy, thể tích hệ thống nuôi cấy 2 lít, tổng số hệ thống sử dụng là 60

Hình 2.2Bố trí thí nghiệm thời gian ngập chìm tạm thời

Bảng 2.4 Các nghiệm thức ảnh hưởng thời gian ngập chìm lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ

STT Kí hiệu công thức Thời gian ngập chìm (phút)

Chỉ tiêu theo dõi: HSN chồi (lần)

Số chồi TB/mẫu (chồi/mẫu) Chiều cao chồi TB (cm)

Thời gian theo dõi: 8 tuần Điều kiện nuôi cấy: Nhiệt độ: 25 ± 2 o C

Thời gian chiếu sáng: 12h/ngày Cường độ chiếu sáng: 2000 lux

Thời gian thực hiện: từ tháng 05/2018 đến 06/2018

Thí nghiệm 5.2 nghiên cứu ảnh hưởng của số lần ngập chìm đến khả năng nhân chồi của cây Cốt khí củ Đối tượng thí nghiệm là cụm chồi cây Cốt khí củ với kích thước đường kính xác định.

2 – 3cm, chiều cao 2 – 3cm ở các thí nghiệm trong nội dung 3 đƣợc sử dụng trong thí nghiệm này Cụm chồi được tách nhỏ các kích thước đường kính 1 cm

Hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời được áp dụng với thành phần môi trường kế thừa từ các kết quả ở nội dung 3 Thời gian nuôi cấy ngập chìm tối ưu được xác định từ thí nghiệm 5.1, trong khi số lần ngập chìm mẫu cấy được trình bày theo bảng 2.5.

Địa điểm và thời gian nghiên cứu

Địa điểm: Trung tâm Ƣơm tạo Doanh nghiệp Nông nghiệp Công nghệ cao

- Ấp 1, xã Phạm Văn Cội, huyện Củ Chi, thành phố Hồ Chí Minh

Thời gian: Từ tháng 01/2018 đến tháng 12/2018.

Vật liệu nghiên cứu

Cụm chồi và chồi cây Cốt khí củ in vitro đã hoàn thành giai đoạn 1 nghiên cứu vào năm 2017 và được nghiệm thu kết quả Những kết quả này đã được áp dụng để tiến hành các nghiên cứu tiếp theo trong giai đoạn 2 vào năm 2018.

Thiết bị và hóa chất sử dụng:

 Máy đo pH cầm tay Hanna 90993

 Tủ cấy vô trùng – SCBN 1200

 Nồi hấp tiệt trùng – HV 110

 Hóa chất và các dụng cụ sử dụng cho lĩnh vực Công nghệ Tế bào Thực vật…

Phương pháp thí nghiệm

Phương pháp nhân nhanh chồi

Mẫu chồi Cốt khí củ được cấy vào môi trường cảm ứng nhằm nhân nhanh chồi, với việc bổ sung chất điều hòa sinh trưởng phù hợp với từng nghiệm thức thí nghiệm.

20 sau đó được để trong điều kiện nhiệt độ phòng 25 ± 2 o C, chiếu sáng 12h, cường độ chiếu sáng 2000 lux trong thời gian 2 tháng

Phương pháp nuôi cấy nhân chồi trên hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời

Dựa trên kết quả thí nghiệm trong nội dung 3 và 4, môi trường tối ưu được áp dụng cho hệ thống nuôi cấy ngập chìm tạm thời Môi trường được đưa vào hộp Plantima qua miệng phía trên, sau đó được đậy kín và hấp khử trùng Mẫu cấy được chuyển vào đĩa giữ mẫu và lắp đặt vào hệ thống cung cấp khí nén với chế độ hẹn giờ để thực hiện các chu kỳ ngập chìm theo cài đặt.

Phương pháp ra rễ tạo cây hoàn chỉnh

Chồi cây Cốt khí củ khỏe mạnh, đang trong trạng thái sinh trưởng bình thường, được cấy vào môi trường ra rễ để tạo ra cây hoàn chỉnh Môi trường ra rễ này được bổ sung chất điều hòa sinh trưởng thực vật thuộc nhóm auxin hoặc dịch chiết tự nhiên với nồng độ tùy thuộc vào từng thí nghiệm cụ thể.

Phương pháp thu thập, xử lý số liệu và các chỉ tiêu theo dõi

- Số cây trung bình/cụm chồi = TSC/TCC (cây)

Trong đó: TSC là tổng số cây/bình

TCC là tổng số cụm chồi/bình

- Trọng lượng tươi trung bình của cụm chồi = TTL/TCC (g)

Trong đó: TTL là tổng trọng lượng tươi của các cụm chồi/bình

TCC là tổng số chồi/bình

- Tỷ lệ tăng sinh chồi = TTLLS/TTLBD * 100% (%)

Trong đó: TTLLS là tổng trọng lượng tươi của các cụm chồi/bình

TTLBD là tổng trọng lượng tươi của các cụm chồi/bình cấy ban đầu

- Chiều cao cây trung bình = TCCC/SC (cm)

Trong đó: TCCC là tổng chiều cao các cây/bình

SC là tổng số cây/bình

- Số lá trung bình = TSL/TSC (số lá)

Trong đó: TSL là tổng tổng số lá/bình

TSC là tổng số cây/bình

- Số rễ trung bình = TSR/TSC (số rễ)

Trong đó: TSR là tổng số rễ của các cây/bình

TSC là tổng số cây/bình Các số liệu được xử lý theo chương trình Excel và phần mềm thống kê Statghaphics

Ngày đăng: 05/10/2023, 20:30

Nguồn tham khảo

Tài liệu tham khảo Loại Chi tiết
[14] Lin, RouZhou. "Induction of callus from P. cuspidatum leaves and determination of resveratrol." Medicinal Plant 2, no. 11 (2011): 35 - 47 Sách, tạp chí
Tiêu đề: Medicinal Plant
Tác giả: Lin, RouZhou
Năm: 2011
[16] M. Berthouly, and H. Etienne. Temporary immersion system: a new concept for use liquid medium in mass propagation. Liquid Culture Systems for in vitro Plant Propagation, 2005 Sách, tạp chí
Tiêu đề: Liquid Culture Systems for in vitro Plant Propagation
Tác giả: M. Berthouly, H. Etienne
Năm: 2005
[18] Noordin, N, R Ibrahim, N H Sajahan, S M M Nahar, S H M Nahar, and N R A Rashid. "Micropropagation of Stevia rebaudiana Bertoni through temporary immersion bioreactor system." In Research and Development Seminar, Bangi (Malaysia), 2012: 26 - 28 Sách, tạp chí
Tiêu đề: Research and Development Seminar, Bangi (Malaysia)
Tác giả: Noordin, N, R Ibrahim, N H Sajahan, S M M Nahar, S H M Nahar, N R A Rashid
Năm: 2012
[19] Rangsayatorn, N. "Micropropagation of Dendrobium draconis Rchb. f. by using temporary immersion system." Kasetsart University., 2013: 5 - 7 Sách, tạp chí
Tiêu đề: Micropropagation of Dendrobium draconis Rchb. f. by using temporary immersion system
Tác giả: Rangsayatorn, N
Nhà XB: Kasetsart University.
Năm: 2013
[20] Robert, M L, J L Herrera-Herrera, G Herrera-Herrera, M Á Herrera- Alamillo, and P Fuentes-Carrillo. "A new temporary immersion Sách, tạp chí
Tiêu đề: A new temporary immersion
Tác giả: Robert, M L, J L Herrera-Herrera, G Herrera-Herrera, M Á Herrera-Alamillo, P Fuentes-Carrillo
[23] Yi, Ai Qin, F P Tong, Q A Song, J Ding, G Li, and Z Huang. "The tissue culture technology of Polygonum cuspidatum sieb et zucc." Hunan Forestry Science & Technology 34, no. 1 (2007): 10 - 12 Sách, tạp chí
Tiêu đề: The tissue culture technology of Polygonum cuspidatum sieb et zucc
Tác giả: Yi, Ai Qin, F P Tong, Q A Song, J Ding, G Li, Z Huang
Nhà XB: Hunan Forestry Science & Technology
Năm: 2007
[11] Cardoso, J. C, and E. O. Ono. "In vitro growth of Brassocattleyaorchid hybrid in different concentrations of KNO3, NH4NO3 and benzylaminopurine." Horticultura Brasileira, 2011: 359-363 Khác
[12] Chang, J S, et al. "Ethanol extract of Polygonum cuspidatum inhibits hepatitis B virus in a stable HBV-producing cell line." Antiviral research 66, no. 1 (2005): 29 - 34 Khác
[13] Julkiflee, A. L., J. Uddain , and S. Subramaniam . "Efficient micropropagation of Dendrobium Sonia-28 for rapid PLBs proliferation."Emirates Journal of Food and Agricuture, 2014: 545-551 Khác
[17] Madzikane-Mlungwana, O, et al. " Differential responses to isoprenoid, N 6-substituted aromatic cytokinins and indole-3-butyric acid in direct plant regeneration of Eriocephalus africanus." Plant growth regulation 82, no.1 (2017): 103 - 110 Khác
[21] Savelieva, E M, et al. "Cytokinin activity of N6-benzyladenine derivatives assayed by interaction with the receptors in planta, in vitro, and in silico.&#34 Khác
[22] Xinnan Wu, Qi Li, Yu Feng, and Qing Ji. "Antitumor Research of the Active Ingredients from Traditional Chinese Medical Plant Polygonum Cuspidatum." Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2018: 10 Khác
[24] Yoshiyuki Kimura, and Hiromichi Okuda. "Resveratrol Isolated from Polygonum cuspidatum Root Prevents Tumor Growth and Metastasis to Lung and Tumor-." The Journal of Nutrition 131, no. 6 (2001): 1844- 1849 Khác
[25] Zhan , Li-Ping, X Zhao, Z Huang, and Z Liu. "Study on Tissue Culture of Polygonum Cuspidatum Sieb Et Zucc." Journal of Liaoning University of Traditional Chinese Medicine, 2012 Khác
[26] Zhang, C, X Zhang, Y Zhang, Q Xu, H Xiao, and X Liang. "Analysis of estrogenic compounds in Polygonum cuspidatum by bioassay and high performance liquid chromatography." Journal of ethnopharmacology 105, no. 1 (2006): 223 - 228 Khác
[27] Zhao, Liu, et al. "In Vitro and in Vivo Studies of the Inhibitory Effects of Emodin Isolated from Polygonum cuspidatum on Coxsakievirus B4.&#34 Khác

HÌNH ẢNH LIÊN QUAN

Hình 1.1 Các thành phần của hệ thống Plantima (Đài Loan) - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 1.1 Các thành phần của hệ thống Plantima (Đài Loan) (Trang 19)
Hình 1.2 Các bộ phận cây Cốt khí củ (Lá, hoa và củ) - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 1.2 Các bộ phận cây Cốt khí củ (Lá, hoa và củ) (Trang 20)
Hình 2.4 Bố trí thí nghiệm ảnh hưởng của thể tích môi trường ngập chìm tạm - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 2.4 Bố trí thí nghiệm ảnh hưởng của thể tích môi trường ngập chìm tạm (Trang 31)
Bảng 2.7 Các nghiệm thức ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 2.7 Các nghiệm thức ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật (Trang 32)
Hình 3.1 Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 3.1 Ảnh hưởng của chất điều hòa sinh trưởng thực vật (Trang 39)
Bảng 3.2 Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 3.2 Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, (Trang 40)
Hình 3.2 Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 3.2 Ảnh hưởng của môi trường khoáng MS biến đổi, (Trang 43)
Bảng 3.3 Ảnh hưởng của thời gian ngập chìm lên - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 3.3 Ảnh hưởng của thời gian ngập chìm lên (Trang 44)
Hình 3.3 Ảnh hưởng của thời gian ngập chìm lên - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 3.3 Ảnh hưởng của thời gian ngập chìm lên (Trang 45)
Bảng 3.4 Ảnh hưởng của số lần ngập chìm lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 3.4 Ảnh hưởng của số lần ngập chìm lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí (Trang 46)
Bảng 3.5 Ảnh hưởng của thể tích nuôi cấy lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 3.5 Ảnh hưởng của thể tích nuôi cấy lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí (Trang 47)
Hình 3.5 Ảnh hưởng của thể tích nuôi cấy lên  khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 3.5 Ảnh hưởng của thể tích nuôi cấy lên khả năng nhân chồi cây Cốt khí củ (Trang 49)
Bảng 3.6 Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Bảng 3.6 Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật (Trang 50)
Hình 3.6 Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật   IBA lên khả năng tạo cây hoàn chỉnh cây Cốt khí củ trên môi trường bán rắn - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
Hình 3.6 Ảnh hưởng của nồng độ chất điều hòa sinh trưởng thực vật IBA lên khả năng tạo cây hoàn chỉnh cây Cốt khí củ trên môi trường bán rắn (Trang 52)
SƠ ĐỒ CÁC BƯỚC THỰC HIỆN QUY TRÌNH NHÂN GIỐNG IN VITRO - Xây dựng quy trình nhân giống in vitro cây cốt khí củ polygonum cuspidatum sieb et zucc giai đoạn 2
SƠ ĐỒ CÁC BƯỚC THỰC HIỆN QUY TRÌNH NHÂN GIỐNG IN VITRO (Trang 59)

TỪ KHÓA LIÊN QUAN

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

TÀI LIỆU LIÊN QUAN

🧩 Sản phẩm bạn có thể quan tâm